流式細胞術是當代細胞分析技術之一，包括細胞計數、細胞內/外抗原分子檢測、細胞中DNA和RNA的倍體分析、細胞的生物學特性及功能分析等。
對于流式細胞分析而言，樣本制備的好壞對終的檢測結果有很大的影響。在免疫學和血液學中，應用流式細胞術分析的樣本多為外周血、骨髓、各類體液(如腦脊液、胸水、腹水)以及人體的組織(如淋巴結、脾、肝等)，這幾種樣本要如何制備和保存呢？
外周血骨髓保存方法
收集樣本后置于加有抗凝劑(一般選擇肝素或EDTA)的試管中，室溫保存，盡量在12 h內處理樣本；若無法及時處理，4℃保存，此時好選擇肝素抗凝管。
外周血骨髓處理步驟
一般不需要特殊處理制備單細胞懸液，所用試劑為淋巴細胞分離液和紅細胞裂解液。但在臨床檢測中，為了避免細胞成分丟失，通常不推薦使用淋巴細胞分離液分離單核細胞。
外周血骨髓怎樣選擇抗凝劑
血液標本可以使用EDTA、ACD(枸櫞酸葡萄糖)或肝素抗凝。一般認為，ACD和肝素抗凝的樣本72 h內細胞是穩定的；EDTA抗凝48 h內是穩定的。EDTA適用于白細胞的免疫表型分析，可防止成熟的髓系細胞貼壁造成細胞損失，并具有較強的抗血小板凝集能力，但對細胞活性的保持不如肝素抗凝。同時EDTA是二價陽離子的強螯合劑，會影響Ca2+相關的抗原位點(如CD11b等)，并會抑制與Ca2+ 相關的細胞功能。肝素常用于白細胞功能研究，可維持Ca2+Mg2+在細胞內的生理濃度，更好保持細胞活性，適用于放置時間較長、不能及時檢測的樣本，但不適合血小板的相關檢測,骨髓樣本優先選擇肝素抗凝。
體液保存方法
收集樣本后置于肝素抗凝管中，室溫保存，且盡量在12 h內處理樣本。若無法及時處理，則4℃保存，時間好不超過48 h。
體液處理方法
樣本1000-1500 rpm離心5 min，棄去上清；加入含有0.1%牛血清白蛋白的磷酸鹽緩沖液(PBS)，離心洗滌5 min；
加入適量PBS重懸。如有細小沉淀，用300目尼龍網過濾后備用。
組織保存方法
切取新鮮組織樣本置于生理鹽水或PBS中，室溫保存，盡量在12 h內處理樣本；若無法及時處理，4℃保存，保存時間好不要超過48 h。不建議用甲醛、乙醇固定細胞，不要用酶、表面活性劑處理細胞。
組織處理方法
流式細胞術常用的組織樣本制備單細胞懸液方法有：機械法、酶處理法、化學試劑處理法及表面活性劑處理法，在流式分析中，為保持抗原活性，多采用機械法處理樣本。采用機械法需注意動作輕柔，盡量減少細胞的損傷。
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